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たていすさんへ 削除/引用 No.5290-3 - 2016/07/29 (金) 17:00:44 - ようこん ありがとう御座います。 先ず無血清を試してないのでやってみたいと思います。 HUは細胞が死なない20ｍMまで振ってみました。やはりその後の影響が心配でしたが。 でもここまで振ってもピークは一つにはならないんですよ。そんなもんなんでしょうかね その次はthymidineも考慮します。

(無題) 削除/引用 No.5290-2 - 2016/07/29 (金) 16:22:34 - たていす Museのパンフレット（BIM015F.pdf）だとJarkut細胞でnocodazole処置してG2/M arrestしています。 その結果には、DNA含量は完全に4nになるわけではないような絵が出ています。その程度のものだと考えたほうが良いのではないでしょうか。 最初に低血清で1日おいて、その後で血清再添加で増殖刺激し、HUでG1/S arrestすると良いのかもしれません。低血清で止まらない細胞も少なくないでしょうから、やってみないとわからないと思います。 hydroxyureaの濃度は、１ｍM前後ではないのでしょうか？基本的にラジカルスカベンジャーですから、濃すぎると別の作用も出てきそうです。 HUからthymidineに変えてみるのもひとつの方法かもしれません。

HUでの細胞同期について教えて下さい 削除/引用 No.5290-1 - 2016/07/29 (金) 14:58:48 - ようこん Her2過剰発現細胞、EGFR過剰発現細胞を用いて薬剤の細胞周期に対する影響を調べる実験をしております。 HUで細胞同期をしておりますが、どうしてもピークが一つになりません。 HUの濃度を0.5から20ｍMに振り、処置時間も3〜24時間で振っております。 解析はMuseのセルアナライザー（フローサイトメーターの簡易版）で行っております。 がん細胞株だと完全に同期する事は不可能なのでしょうか？ 誰か詳しい方がおりましたら方法を御指示頂けるとありがたいです。

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