Bio Technical フォーラム

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(無題) 削除/引用
No.2105-4 - 2013/06/15 (土) 05:49:09 - mon
「低圧力」とは「電子レンジの低出力」が正しい表現ですね。
新人には、電子レンジでのアガロース溶解について、アガロース粒子が透明になって完全に見えなくなってから、さらに二回沸騰させる、と長年教えています。
アガロース濃度が高い場合、フラスコの底にノリ状に溶け残り易いので、それが無くなったのを確認して、さらに二回沸騰させます。
見た目で液量が減ることは無いので、アガロースが部分的に固まりそうな差し水はNGです。もし差し水した場合、再度上記注意事項を守れば良いです。
それでも失敗するなら、オートクレーブしましょう。

(無題) 削除/引用
No.2105-3 - 2013/06/15 (土) 05:34:12 - 独り言
なんだか、やけに手のかかった溶かし方をしているんだなぁ。

1、アガロースとバッファーを混ぜる。
2、レンジでチン。沸騰するまで。吹きこぼれないように気をつける。
3、50-60℃ぐらい(触った感覚)になるまでまつ(耐熱フラスコとかなら水をかけても)
4、トレーに注ぐ。

手順が多いと、何かが間違う可能性も高くなる。必要ない事を省いた方が失敗は少なくなる。
ただし、ラボの教えに背くと、学生さんだと怒られちゃうかも。



もしかして、エチブロを沸騰直後にいれて、エチブロが不活性かしているとか。

(無題) 削除/引用
No.2105-2 - 2013/06/15 (土) 05:22:29 - モモ
きちんと固まっていないだけではないですか?

室温なら一時間以上待つとか、4度で冷やして固めるとかでも改善しませんか?

アガロースゲル作成について 削除/引用
No.2105-1 - 2013/06/15 (土) 03:17:02 - あひる
初歩的な質問で恐縮ですが、
どうしても解決できないのでこちらに投稿させていただきます。

2%アガロースゲルを電気泳動で用いるのですが、
そのゲルが上手く作れず困っております。

以下の三点には問題ないことがわかっています。

一、PCRについて
ラダー自体が不鮮明あるいは検出されないことと、
先輩の作ったゲルでは同じ時に作ったPCR産物の
バンド、ラダーともに現れています。

二、試薬の種類と量
バッファーとアガロースの種類と量に関しては、
同じもので先輩のゲルが上手くできています。

三、トレイに流し込む工程
トレイに流し込みコームを挿す工程は
先輩と一緒に作成し成功したことから
ゲルにムラができ、またウェルが破れたり
ということもありません。

充分にアガロースが溶けていないのかと思い、
低圧力でしっかり溶解させているつもりですが
それでもだめでした。

ゲルの作成手順
@ビーカーにアガロースを測りとる。
Aバッファーを加える。
B軽く振り混ぜてから、低圧力で沸騰寸前まで温め溶かす(途中、何度か取り出し振り混ぜる)。
Cビーカーにラップのついた状態で重さを測り、蒸発した分と+α蒸留水を加える。
D高圧力で沸騰させ、もとの重量になるまで蒸発させる。

先輩と一緒にゲルを作って頂いた時も、
全く同じ操作で作成しバンドとラダーがクリアに検出されました。
しかし自分で作成するとどうしてかラダーすら不鮮明になってしまいます。
これまでゲルを何度も作成し電気泳動をしてきましたが、こんなことにはならなかったためバッファーも疑いましたが、どうやら私の溶かす工程に問題がありそうです。

もしも何かこの失敗にお気づきの点がありましたら、
どうかお手を貸していただきたく思います。
それでは長くなりましたが、よろしくお願い致します。

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