DNA用の電気えいどうのアガロース再利用。
PCRしたサンプルで余ったものをマーカーとして使う。
SDSpageなどで、溶液を作るのにストックソリューションから
分注するピペットをそれ専用にして再利用する。
50mL、15mLチューブを洗って使う。
エチブロ除去用のキットやシステムをかわずに、活性炭を
かって吸着させる。
キットをかわず、それに必要なコンポーネント(とくに分子生物学ようのキット)をばらでかう。オリゴdTとかつけてくれるけどそんなこんなでバカみたいに高いことがあるので。
オリゴdTやランダムプライマーをDNAオリゴマーとして合成依頼する。
ケミルミのきっとは膜が均一に浸るぎりぎりの量をつかう。
ウエスタンの抗体は1ul/eachとし、PBST/ブロッキング溶液の量で稀釈率を調整する。
ウエスタンで使うフィルムは必要な大きさに切るか、30s、1minとか違う長さのexposureを１枚のフィルムで位置をかえておこなう。10x20のフィルムでミニジェルだと4かいexposureできる。
ウエスタンの膜を必要なバンドの位置に近い部分だけがトランスファーできればいいとき、その部分を含む場所だけを膜でカバーする。
SDSPAGEのrunning bufferを再利用する。
TBEやTAEをさいりようする。
１枚のバクテリアプレートでエリアを分割し、違うトランスフォーマントを
プレーティングする(場合によっては可也危険)
もしかしたら、3.5や6cmのバクテリアプレートを使うとアガ-は節約できるかも(ディッシュのコストが分かりませんので調べてください)。
うーんもうひとつ思いついたけど、、、、なんか思い出せない、、、、
適当に実験をサボるとか、、、、
以上が今まで見てきた、聞いてきた話や経験など含めたものです。 |
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